精子的形態分析,你需要了解
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文: 鮑布和
精子正常形態
(a、b):體外結合於透明帶的精子,Shorr染色;
(c):性交後宮頸粘液中的精子,巴氏染色。
塗片的製作與染色
每份新鮮的精液標本應製備2張以上的塗片。
每次取樣前要充分混勻精液。
對於未稀釋的精液,採用拉薄技術;對於已洗滌的精液,採用移液管法。
要用鉛筆做記號,記號筆會脫色。
染色時2張塗片背靠背,使染色時間一致。
用水沖洗已染色的塗片的力度和時間也要儘量一致。
(a)未經稀釋的精液的塗片方法;
(b)洗滌後的精子懸液的塗片方法。
在精液液滴之前「拉」,而不要在液滴之後「推」
精液塗片的厚度,影響因素有:
液體的體積(10 µl)…………體積越小,則精子分散越好
拉片的角度( 45°)…………角度越大,則塗片越薄
塗片的速度(~1 秒)…………速度越高,則片子越厚
空氣乾燥的精液塗片,如果固定會出現的缺點:
脫水…………………………比濕片小
剪切力………………………不成熟的精子頭膨脹
滲透損傷……………………胞漿小滴的丟失,過多的殘餘胞漿滯留
推薦採用Papanicolaou、Shorr或Diff-Quik染色法。
使用光學顯微鏡觀察,精子頭部頂體區為淺藍色、頂體後區為深藍色,中段略呈紅色,尾部為藍色或紅色。
殘餘的胞漿小滴染成粉紅色或橙紅色。
3種染色方法的選擇
Shor若採用人工分析精子形態,建議用巴氏染色法,塗片可以永久保存,符合質控要求。
Diff-Quik染色法適合CASA,只有3個步驟,用時不足一分鐘,但塗片不能保存。
所以CASA必須能夠保存每條精子的形態圖片,而且要有圖像回放功能才符合質控要求。
r染色法與巴氏染色的效果近似,步驟較少,塗片可以長期保存,適合人工分析。
改良巴氏染色
有20個步驟,耗時40-60分鐘。
脫色時間長短影響染色強度。
染色背景較淺。
Diff-Quik染色
有4個步驟,耗時1-2分鐘。
僅精子表面著色,對細胞膜影響小。
背景較深。
精子形態
正常精子形態
精子頭部長度為4.0-5.0um,
寬度為2.5-3.5um,
長寬之比為1.50-1.75,
頂體界限清晰,占頭部的40%-70%,
中段稍細,寬度<1um,約為頭部長度的1.5倍,
尾部直,均一,比中段細,非捲曲,長度約為45um,
形態異常精子
1.畸形精子:頭部畸形、中段偏厚、雙尾
2.畸形精子:頭部畸形、中段畸形
3.畸形精子:梨形頭、中段彎曲、不規則、胞漿小滴過多
4.畸形精子:頭部畸形
5.畸形精子:梨形頭
6.畸形精子:頭部畸形
形態異常精子
19畸形精子:頭部畸形、空泡數>2
20.畸形精子:頭部正常、頂體>70%
21.畸形精子:頭部畸形、頂體>70%.
22.畸形精子:頭部畸形、頂體<40%
23畸形精子:頭部畸形、頂體<40%
對於頭部異常的描述
對於頸和中段異常的描述
對於主段異常的描述
非精子細胞
未評估精子
精子多重缺陷的指標
畸形精子指數(the teratozoospermia index ,TZI)=缺陷總數/缺陷精子數
精子畸形指數(the sperm deformity index ,SDI)=缺陷總數/精子總數
TZI等於1表示每個異常精於只有一種缺陷,TZI等於3則表示每個異常精子都有頭部、中段和尾部缺陷。
所以,TZI反映的是每個精子的缺陷程度,是針對每個精子個體而言,而精子密度、活動率、前向活動率和正常形態以及SDI是就每一份精液的整體而言。
要提醒注意的是,畸形精子指數的數值介於1.00和3.00之間。
以前的報導提示,"TZI>1.6與未經治療不育夫婦的低生育率有關,而且SDI 1.6是體外受精失敗的閾值。
這些參數預示精子在體內和體外的功能情況。
例:使用六鍵計數器每次計數200條精子。
在第1次計數時,42條正常158條異常。
在158條異常精子中,140條有頭部缺陷,102條有頸部缺陷,30條有尾部缺陷,44條有多餘的胞漿小滴殘留。
在第2次計數時,36條正常,164條異常。
其中122條有頭部畸形,22條頸部畸形,36條有多餘的胞漿小滴。
計算TZI時,用總的畸形數(140+102+30+44+122+108+22+36 =
604畸形)除以異常精子數(158+164 = 322), TZI = 604/322 = 1.88; SDI= 604/400=1.51 。
計算機輔助精子形態學計量分析的優勢
CASA的影像分析使精子形態學分析評估量化,能獲得更多的精子特徵參數。
自動分析系統比手工操作具有更好的客觀性、精確性和可重複性,變異係數<7%, 甚至比熟練的操作人員更精確。
面對門診量巨大,人力不足的情況,還要把精子形態學分析列為常規檢查,同時執行嚴格的質控措施,確實有許多困難。
使用CASA是最好的出路(可任意選擇15%標準或4%標準)。
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