提純蛋白質時鹽析法與有機溶劑法的優缺點 - 多學網

而對同類物質，如酶和雜蛋白，rna和dna以及不同結構的蛋白質、酶、核酸之間的分離，情況則複雜得多，主要應用的方法有鹽析法、有機溶劑沉澱法、等電點沉澱 ... 提純蛋白質時鹽析法與有機溶劑法的優缺點 2021-03-0623:07:08字數6108閱讀6182 1樓：留遐思侍醜 鹽析是加入了濃的可溶性鹽溶液，下降了蛋白質的溶解度而使蛋白質析出，屬於物理程序。

有機溶劑、重金屬離子是使蛋白質變性，喪失其生理活性。

鹽析的蛋白質加水可溶解，而變性後的蛋白質不會恢復。

2樓：韓小飛 1、鹽析法優點是鹽析法簡單方便，可用於蛋白質抗原的粗提、丙種球蛋白的提取、蛋白質的濃縮等。

缺點是鹽析法提純的抗原濃度不高，只用於抗原的初步純化。

2、有機溶劑沉澱法 優點是是分辨能力比鹽析法高，溶劑容易除去且可**，沉澱的蛋白質不需要脫鹽處理，缺點是有機溶劑易使蛋白質或酶變性，常採用降低溫度的方法進行有效控制，而且有機溶劑使用量大，溶劑的使用及**；儲存都比較困難或麻煩。

3樓：恨海狂人梅文俊 從細胞中提取出來的生物大分子是不純淨的，必須進一步分離純化才能獲得純品。

在生物大分子製備工作中，分離純化是比較複雜和重要的一個環節。

對於異類的物質，如提純蛋白質和酶時混雜著核酸，提純核酸時混雜著蛋白質或多糖，一般可用專一性酶水解、有機溶劑抽提、選擇性分部沉澱等方法處理，小分子物質常在整個製備過程中多次液相與固相互相轉化被分離或最後用透析方法除去。

而對同類物質，如酶和雜蛋白，rna和dna以及不同結構的蛋白質、酶、核酸之間的分離，情況則複雜得多，主要應用的方法有鹽析法、有機溶劑沉澱法、等電點沉澱法、吸附法、結晶法、電泳法、超速離心法、柱層析法等。

其中鹽析法、等電點法、結晶法用於蛋白、酶的提純較多；有機溶劑抽提和沉澱用於核酸提純較多；柱層析法、梯度離心法在蛋白質和核酸的提純工作中應用均十分廣泛。

有機溶劑沉澱法的優缺點？ 4樓：笨蛋 優點無法用水沉澱法做的可以選用該方法有機溶劑種類多可以根據實驗要求選擇最合適的溶劑以使實驗儘可能準確缺點有機溶劑較貴大多有毒使用完後要**較麻煩另外過濾時可能較麻煩因為有機溶劑一般流動性較差沉澱物也必須經過處理去除殘留溶劑希望有用 蛋白質分離純化的四種方法 5樓：常山趙子龍 1、鹽析法： 鹽析法的根據是蛋白質在稀鹽溶液中，溶解度會隨鹽濃度的增高而上升，但當鹽濃度增高到一定數值時，使水活度降低，進而導致蛋白質分子表面電荷逐漸被中和，水化膜逐漸被破壞，最終引起蛋白質分子間互相凝聚並從溶液中析出。

2、有機溶劑沉澱法： 有機溶劑能降低蛋白質溶解度的原因有二：其 一、與鹽溶液一樣具有脫水作用；其 二、有機溶劑的介電常數比水小，導致溶劑的極性減小。

3、蛋白質沉澱劑： 蛋白質沉澱劑僅對一類或一種蛋白質沉澱起作用，常見的有鹼性蛋白質、凝集素和重金屬等。

4、聚乙二醇沉澱作用： 聚乙二醇和右旋糖酐硫酸鈉等水溶性非離子型聚合物可使蛋白質發生沉澱作用。

6樓：趙小逛 2.1根據分子大小不同進行分離純化 蛋白質是一種大分子物質,並且不同蛋白質的分子大小不同,因此可以利用一些較簡單的方法使蛋白 質和小分子物質分開,並使蛋白質混合物也得到分離。

根據蛋白質分子大小不同進行分離的方法主要有透析、超濾、離心和凝膠過濾等。

透析和超濾是分離蛋白質時常用的方法。

透析是將待分離的混合物放入半透膜製成的透析袋中,再浸入透析液進行分離。

超濾是利用離心力或壓力強行使水和其它小分子通過半透膜,而蛋白質被截留在半透膜上的過程。

這兩種方法都可以將蛋白質大分子與以無機鹽為主的小分子分開。

它們經常和鹽析、鹽溶方法聯合使用,在進行鹽析或鹽溶後可以利用這兩種方法除去引入的無機鹽。

由於超濾過程中,濾膜表面容易被吸附的蛋白質堵塞,以致超濾速度減慢,截流物質的分子量也越來越小。

所以在使用超濾方法時要選擇合適的濾膜,也可以選擇切向流過濾得到更理想的效果 離心也是經常和其它方法聯合使用的一種分離蛋白質的方法。

當蛋白質和雜質的溶解度不同時可以利用離心的方法將它們分開。

例如,在從大米渣中提取蛋白質的實驗中,加入纖維素酶和α-澱粉酶進行預處理後,再用離心的方法將有用物質與分解掉的雜質進行初步分離[3]。

使蛋白質在具有密度梯度的介質中離心的方法稱為密度梯度(區帶)離心。

常用的密度梯度有蔗糖梯度、聚蔗糖梯度和其它合成材料的密度梯度。

可以根據所需密度和滲透壓的範圍選擇合適的密度梯度。

密度梯度離心曾用於純化蘇雲金芽孢桿菌伴孢晶體蛋白,得到的產品純度高但產量偏低。

蔣辰等[6]通過比較不同密度梯度介質的分離效果,利用溴化鈉密度梯度得到了高純度的蘇雲金芽孢桿菌伴孢晶體蛋白。

凝膠過濾也稱凝膠滲透層析,是根據蛋白質分子大小不同分離蛋白質最有效的方法之一。

凝膠過濾的原理是當不同蛋白質流經凝膠層析柱時,比凝膠珠孔徑大的分子不能進入珠內網狀結構,而被排阻在凝膠珠之外,隨著溶劑在凝膠珠之間的空隙向下運動並最先流出柱外;反之,比凝膠珠孔徑小的分子後流出柱外。

目前常用的凝膠有交聯葡聚糖凝膠、聚丙烯醯胺凝膠和瓊脂糖凝膠等。

在甘露糖蛋白提純的過程中使用凝膠過濾方法可以得到很好的效果,純度鑑定證明產品為分子量約為32kda、成分是多糖∶蛋白質(88∶12)、多糖為甘露糖的單一均勻糖蛋白[1]。

凝膠過濾在抗凝血蛋白的提取過程中也被用來除去大多數雜蛋白及小分子的雜質[7]。

2.2根據溶解度不同進行分離純化 影響蛋白質溶解度的外部條件有很多,比如溶液的ph值、離子強度、介電常數和溫度等。

但在同一條件下,不同的蛋白質因其分子結構的不同而有不同的溶解度,根據蛋白質分子結構的特點,適當地改變外部條件,就可以選擇性地控制蛋白質混合物中某一成分的溶解度,達到分離純化蛋白質的目的。

常用的方法有等電點沉澱和ph值調節、蛋白質的鹽溶和鹽析、有機溶劑法、雙水相萃取法、反膠團萃取法等。

等電點沉澱和ph值調節是最常用的方法。

每種蛋白質都有自己的等電點,而且在等電點時溶解度最 低;相反,有些蛋白質在一定ph值時很容易溶解。

因而可以通過調節溶液的ph值來分離純化蛋白質。

王洪新等[8]研究茶葉蛋白質提取過程發現,ph值為時茶葉蛋白提取效果最好,提取率達到36·8%,初步純化得率為91·0%。

李殿寶[9]在從葵花脫脂粕中提取蛋白質時將蛋白溶液的ph值調到3~4,使目標蛋白於等電點沉澱出來。

等電點沉澱法還應用於葡萄籽中蛋白質的提取。

李鳳英等[10]測得葡萄籽蛋白質的等電點為3·8。

他們利用鹼溶法提取葡萄籽蛋白質,得到了最佳的提取工藝為:以1×10-5mol·l-1的naoh溶液,按1∶5的料液比,在40℃攪拌40min,葡萄籽蛋白質提取率達73·78%。

另外還可以利用鹼法提取大米蛋白,其持水性、吸油性和起泡性等均優於酶法提取[11]。

利用酸法提取得到的鰱魚魚肉蛋白質無腥味、色澤潔白,蛋白質產率高達90%[12]。

蛋白質的鹽溶和鹽析是中性鹽顯著影響球狀蛋白質溶解度的現象,其中,增加蛋白質溶解度的現象稱鹽溶,反之為鹽析。

應當指出,同樣濃度的二價離子中性鹽,如mgcl2、(nh4)2so4對蛋白質溶解度影響的效果,要比一價離子中性鹽如nacl、nh4cl大得多。

在葡萄籽蛋白提取工藝中除了可以利用鹼溶法還可以利用鹽溶法來提取蛋白質,其最佳提取工藝是: 以10%nacl溶液,按1∶25的料液比,在30℃攪拌提取30min,蛋白質提取率為57·25%[10]。

鹽析是提取血液中免疫球蛋白的常用方法,如多聚磷酸鈉絮凝法、硫酸銨鹽析法,其中硫酸銨鹽析法廣泛應用於生產。

由於硫酸銨在水中呈酸性,為防止其對蛋白質的破壞,應用氨水調ph值至中性。

為防止不同分子之間產生共沉澱現象,蛋白質樣品的含量一般控制在0·2%~2·0%。

利用鹽溶和鹽析對蛋白質進行提純後,通常要使用透析或者凝膠過濾的方法除去中性鹽[13]。

有機溶劑提取法的原理是:與水互溶的有機溶劑(如甲醇、乙醇)能使一些蛋白質在水中的溶解度顯著降低;而且在一定溫度、ph值和離子強度下,引起蛋白質沉澱的有機溶劑的濃度不同,因此,控制有機溶劑的濃度可以分離純化蛋白質。

例如,在冰浴中磁力攪拌下,在4℃預冷的培養液中緩慢加入乙醇(-25℃),可以使冰核蛋白析出,從而純化冰核蛋白[14]。

由於在室溫下,有機溶劑不僅能引起蛋白質的沉澱,而且伴隨著變性。

因此,通常要將有機溶劑冷卻,然後在不斷攪拌下加入有機溶劑防止區域性濃度過高,蛋白質變性問題就可以很大程度上得到解決。

對於一些和脂質結合比較牢固或分子中極性側鏈較多、不溶於水的蛋白質,可以用乙醇、丙酮和丁醇等有機溶劑提取,它們有一定的親水性和較強的親脂性,是理想的提取液。

冷乙醇分離法提取免疫球蛋白最早由cohn於1949年提出,用於製備丙種球蛋白。

冷乙醇法也是目前who規程和中國生物製品規程推薦的方法,不僅解析度高、提純效果好、可同時分離多種血漿成分,而且有抑菌、清除和滅病毒的作用[15]。

萃取是分離和提純有機化合物常用的一種方法,而雙水相萃取和反膠團萃取可以用來分離蛋白質。

雙水相萃取技術(aqueoustwophaseextraction,atpe)是指親水性聚合物水溶液在一定條件下形成雙水相,由於被分離物在兩相中分配的不同,便可實現分離,被廣泛用於生物化學、細胞生物學和生物化工等領域的產品分離和提取。

此方法可以在室溫環境下進行,雙水相中的聚合物還可以提高蛋白質的穩定性,收率較高。

對於細胞內的蛋白質,需要先對細胞進行有效破碎。

目的蛋白常分佈在上相併得到濃縮,細胞碎片等固體物分佈在下相中。

採用雙水相系統濃縮目的蛋白,受聚合物分子量及濃度、溶液ph值、離子強度、鹽型別及濃度的影響[16]。

反膠團萃取法是利用反膠團將蛋白質包裹其中而達到提取蛋白質的目的。

反膠團是當表面活性劑 在非極性有機溶劑溶解時自發聚集而形成的一種奈米尺寸的聚集體。

這種方法的優點是萃取過程中蛋 白質因位於反膠團的內部而受到反膠團的保護。

程世賢等[17]就利用反膠團萃取法提取了大豆中的蛋白質。

2.3根據電荷不同進行分離純化 根據蛋白質的電荷即酸鹼性質不同分離蛋白質的方法有電泳和離子交換層析兩類。

在外電場的作用下,帶電顆粒(如不處於等電點狀態的蛋白質分子)將向著與其電性相反的電極移動,這 種現象稱為電泳。

聚丙烯醯胺電泳是一種以聚丙烯醯胺為介質的區帶電泳,常用於分離蛋白質。

它的優點是裝置簡單、操作方便、樣品用量少。

等電聚焦是一種高解析度的蛋白質分離技術,也可以用於蛋白質的等電點測定。

利用等電聚焦技術分離蛋白質混合物是在具有ph梯度的介質中進行的。

在外電場作用下各種蛋白質將移向並聚焦在等於其等電點的ph值梯度處形成一個窄條帶。

孫臣忠等[18]研究了聚丙烯醯胺電泳、等電聚焦電泳和等速提純電泳在分離純化蛋白質中的應用。

結果發現,聚丙烯醯胺電泳的條帶解析度低,加樣量不高;等電聚焦電泳解析度最高,可以分離同種蛋白的亞成分,加樣量最小;等速提純電泳區帶解析度較高,可將樣品分成單一成分,加樣量最大。

離子交換層析(ionexchangechromatography,iec)是以離子交換劑為固定相,依據流動相中的組分離子與交換劑上的平衡離子進行可逆交換時結合力大小的差別而進行分離的一種層析方法。

離子交換層析中,基質由帶有電荷的樹脂或纖維素組成。

帶有正電荷的為陰離子交換樹脂;反之為陽離子交換樹脂。

離子交換層析同樣可以用於蛋白質的分離純化。

當蛋白質處於不同的ph值條件下,其帶電狀況也不同。

陰離子交換基質結合帶有負電荷的蛋白質,被留在層析柱上,通過提高洗脫液中的鹽濃度,將吸附在層析柱上的蛋白質洗脫下來,其中結合較弱的蛋白質首先被洗脫下來。

反之陽離子交換基質結合帶有正電荷的蛋白質,結合的蛋白可以通過逐步增加洗脫液中的鹽濃度或是提高洗脫液的ph值洗脫下來。

李全巨集等[19]將離子交換層析應用於濃縮蘋果汁中蛋白質的提純。

另外,離子交換層析還用於抗凝血蛋白的提取[7]。

2.4利用對配體的特異親和力進行分離純化 親和層析是利用蛋白質分子對其配體分子特有的識別能力(即生物學親和力)建立起來的一種有效的純化方法。

它通常只需一步處理即可將目的蛋白質從複雜的混合物中分離出來,並且純度相當高。

應用親和層析須瞭解純化物質的結構和生物學特性,以便設計出最好的分離條件。

近年來,親和層析技術被廣泛應用於靶標蛋白尤其是疫苗的分離純化,特別是在融合蛋白的分離純化上,親和層析更是起到了舉足輕重的作用,因為融合蛋白具有特異性結合能力[20]。

親和層析在基因工程亞單位疫苗的分離純化中應用也相當廣泛[21]。

範繼業等[22]利用殼聚糖親和層析提取的抑肽酶比活達到71428baee·mg-1,純化**率達到62·5%。

該方法成本較低,吸附劑**低廉、機械強度高、抗汙染能力較強、非特異性吸附較小、可反覆使用、適用性廣,產品質量穩定。

3展望 在實際工作中,很難用單一方法實現蛋白質的分離純化,往往要綜合幾種方法才能提純出一種蛋白質。

理想的蛋白質分離提純方法,要求產品純度和總**率越高越好,但實際上兩者難以兼顧,因此,考慮分離 提純的條件和方法時,不得不在兩者之間作適當的選擇;一般情況下,科研上更多地選擇前者,工業生產上 更多地選擇後者。

因此,每當需要提純某種蛋白質時,首先要明確分離純化的目的和蛋白質的性質,以便選擇最佳的分離純化方法,從而得到理想的效果。

今後,蛋白質提純技術的發展將不斷促進對蛋白質性質的研究,同時對蛋白質性質的研究也將反過來提高蛋白質分離純化技術,兩者的互相促進終將會對生命科學的進步作出重大貢獻。

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